Генный драйв может снизить численность пятнистокрылой дрозофилы
Конструкции, способные к генному драйву (передаче по наследству с частотой более 50%) и вызывающие бесплодие у самок, разрабатываются для сокращения численности вредных насекомых. Авторы статьи в PNAS описали несколько конструкций для пятнистокрылой дрозофилы, которые в лабораторных условиях успешно передаются потомству и вызывают бесплодие у самок. По результатам математического моделирования, регулярное выпускание таких насекомых в природу может быть эффективнее использования стерильных самцов.
Исследователи из Университета штата Северная Каролина в Рэли создали систему для генного драйва, основанную на CRISPR-Cas9 (homing gene drive system), которую можно использовать для сокращения численности пятнистокрылой дрозофилы Drosophila suzukii. Пятнистокрылые дрозофилы повреждают мягкие фрукты и ягоды. Их естественный ареал — Юго-Восточная Азия, но сейчас они обитают также в Европе, Северной и Южной Америки.
В последние годы предложены различные генетические методы сокращения численности насекомых-вредителей: трансгенные линии с репрессируемой тетрациклином генетической системой, летальной для самок; уничтожение Х-хромосом при сперматогенезе с помощью CRISPR-Cas-9, снижающее количество самок; воздействие на отдельные гены, позволяющее получить достаточное количество стерильных самцов для выпуска в природу, и технология генного драйва.
Генный драйв — явление, при котором вероятность наследования определенного аллеля отклоняется от менделевской (в данном случае увеличивается). Генноинженерные конструкции для генного драйва кодируют Cas9 и гидовую РНК; экспрессия этой конструкции приводит к тому, что в парной хромосоме вместо аллеля дикого типа возникает та же последовательность (это явление называется хомингом). В результате новая аллель наследуется более чем половиной потомков.
Генноинженерные системы генного драйва уже были опробованы на дрозофилах, мышах и москитах. Система, предложенная в новой работе, нацелена на ген doublesex (dsx), который отвечает за определение пола. Этот ген экспрессируется как у самцов, так и у самок, а затем его мРНК подвергается альтернативному сплайсингу: у самок образуется более короткая изоформа белка dsxf, у самцов — более длинная dsxm. Продукция dsxf обусловлена наличием специфичной для самок версии гена transformer (tra). Женские гениталии и специфичные для самок формы поведения развиваются только при наличии изоформы dsxf.
Конструкция для генного драйва, предложенная в новой работе, содержала ген гидовой РНК, а также ген флуоресцентного белка DsRed, который облегчал отслеживание передачи потомкам. Они были фланкированы участками, гомологичными мишени, — это способствовало встраиванию конструкции в разрезанный участок. Мишенью гидовой РНК был экзон dsx, необходимый для функции «женской» изоформы dsxf, но не «мужской» dsxm. Ген Cas9 встраивался в другой участок генома и стоял под промотором nanos, который обеспечивает экспрессию только в клетках зародышевой линии. (Этот ген наследовался по-менделевски, что повышает биобезопасность системы — в отсутствие Cas9 генного драйва не будет.)
Авторы получили трансгенных мух с конструкциями для хоминга; линии поддерживались скрещиванием самцов с самками дикого типа. Гемизиготные (имеющие одну копию конструкции) самки большинства линий были бесплодны и экспрессировали как dsxf, так и dsxm. Авторы также получили вариант конструкции, с которой гемизиготные самки сохраняли фертильность, а бесплодными были только гомозиготы (это полезно, так как, по данным моделирования, численность снижается быстрее, если хоминг происходит у обоих полов.)
Скрещивание линий дрозофил, несущих гены Cas9, и линий с конструкциями для хоминга, позволило получить мух, которые при скрещивании с диким типом давали потомство, наследующее аллель драйва с частотой, существенно больше 50%.В одной из линий уровень передачи гена гена DsRed достиг 94–99%.
Известны случаи, когда в геномах москитов появлялись мутации в участках, фланкирующих сайт встраивания, и это препятствовало генному драйву. Авторы подтвердили, что мутантные аллели dsx у D. suzukii с небольшими делециями недалеко от сайта, в который вносит разрез Cas9, не вызывают резистентности к драйву (хотя и допускают, что такие мутации могут появиться в дальнейшем).
Также авторы создали математическую модель, в которой «выпускали» самцов, гемизиготных по генам Cas9 и конструкции для хоминга, в популяцию дикого типа, чтобы выяснить, как быстро это приведет к ее вымиранию. Предложенные конструкции оказались более эффективными, чем использование стерильных самцов; интересно, что линии с доминантной и рецессивной стерильностью самок по эффективности не различались. Полученные результаты могут открыть путь к дешевому и эффективному снижению численности вредных насекомых, считают авторы.
Источник
Yadav, A. K., et al. CRISPR/Cas9-based split homing gene drive targeting doublesex for population suppression of the global fruit pest Drosophila suzukii. Proceedings of the National Academy of Sciences. (2023). DOI: 10.1073/pnas.2301525120.